組織培養的方法(組織培養的具體方法是什么)
1.組織培養的具體方法是什么
一、培養基配制 配制培養基有兩種方法可以選擇，一是購買(mǎi)培養基中所有化學(xué)藥品，按照需要自己配制；二是購買(mǎi)商品的混合好的培養基基本成分粉劑，如MS、B5等。
自己配制可以節約費用，但浪費時(shí)間、人力、且有時(shí)由于藥品的質(zhì)量問(wèn)題，給實(shí)驗帶來(lái)麻煩。就目前國內的情況看，大部分還是自己配制。
為了方便起見(jiàn)，現以MS培養基為例介紹配置培養基的主要過(guò)程。 1.配制幾種母液 1.配制MS大量元素母液 一般將大量元素分別配制成100倍的母液，使用時(shí)再分別稀釋100倍。
分別稱(chēng)取 NH4NO3 165g KH2PO4 17g KNO3 190g CaCl2·2H2O 44g MgSO4·7H2O 37g 各自配成1L的母液。倒入1L試劑瓶中，存放于冰箱中。
2.配制MS微量元素母液 一般將微量元素配制成100倍母液。 依次稱(chēng)取 KI 0.083g Na2MoO4·2H2O 0.025g H3BO3 0.62g CuSO4·5H2O 0.0025g MnSO4·H2O 1.69g CoCl2·6H2O 0.0025g ZnSO4·7H2O 0.86g 配成1L母液，倒入1L試劑瓶中，存放于冰箱中。
CuSO4·5H2O和CoCl2·6H2O 由于稱(chēng)取量很小，如果天平精確度沒(méi)有達到萬(wàn)分之一，可先配成調整液。 分別稱(chēng)取 CuSO4·5H2O 0.05g CoCl2·6H2O 0.05g 各自配成100ml的調整液，然后取5ml就還有0.0025g的量。
3.配制MS有機母液 一般配制成100倍MS有機母液。 依次稱(chēng)取 肌醇 10g 鹽酸硫胺素（VB1） 0.01g 煙酸 0.05g 甘氨酸 0.2g 鹽酸吡哆醇（VB6） 0.05g 配成1L母液，倒入1L試劑瓶中，存放于冰箱中。
4.配制MS鐵鹽母液 一般配制成100倍MS鐵鹽母液。 依次稱(chēng)取 EDTA二鈉3.73g FeSO4·7H2O2.78g 配成1L母液，倒入1L試劑瓶中，存放于冰箱中。
所以MS母液有5種大量元素母液，加上MS微量元素母液、MS有機母液和MS鐵鹽母液，共8種母液。 激素母液的配制 各種生長(cháng)素和細胞分裂素要單獨配制，不能混合在一起，生長(cháng)素類(lèi)一般要先用少量95%的酒精或1當量的NaOH溶解，細胞分裂素一般要先用1當量的鹽酸溶解，然后再加蒸餾水定容。
一般取100mg配成100ml母液。 2.配制培養基 以配置1L MS培養基為例，按順序進(jìn)行如下操作： 1.先在燒杯中放入一些蒸餾水。
2.分別取上面八種母液10ml倒入。 3.一般稱(chēng)取30g蔗糖倒入，攪拌溶解。
4.加蒸餾水用量筒定溶至1L。 5.按設計好的方案添加各種激素，由于激素的用量很小，而且激素對組培植物的生長(cháng)至關(guān)重要。
所以有條件的話(huà)最好用微量可調移液器吸取，減少誤差。 6.用精密試紙或酸度計調整PH至5.7-5.8。
（有條件的話(huà)使用酸度計，比較精確） 可配1當量的HCL和1當量的NaOH用來(lái)調溶液PH值。 1當量HCL配制：用量筒量取8.3ml配成100ml溶液。
1當量NaOH配制：稱(chēng)取NaOH 4g 配成100ml溶液。 7.稱(chēng)取5g左右瓊脂粉（質(zhì)量好的瓊脂粉），倒入上面配好的溶液中，放在電爐上加熱至沸騰，直到瓊脂粉熔化。
8.稍微冷卻后，分裝入培養容器中。無(wú)蓋的培養容器要用封口膜或牛皮紙封口，用橡皮筋或繩子扎緊。
9.放入消毒滅菌鍋滅菌，滅菌20分鐘左右。 10.滅菌后從滅菌鍋中取出培養基，平放在實(shí)驗臺上令其冷卻凝固。
二、滅菌 滅菌是組織培養重要的工作之一。初學(xué)者要清楚有菌和無(wú)菌的范疇。
有菌的范疇是：凡是暴露在空氣中的物體，接觸自然水源的物體，至少它的表面都是有菌的。依此觀(guān)點(diǎn)，無(wú)菌室等未處理的地方、超凈臺的表面、簡(jiǎn)單煮沸的培養基、我們使用的刀、剪在未處理之前、我們身體的整個(gè)外表及與外界相連的內表，如整個(gè)消化道、呼吸道，即我們呼出的氣體、培養容器無(wú)論洗得多干凈等等都是有菌的。
這里所指的菌，包括細菌、真菌、放線(xiàn)菌、藻類(lèi)及其他微生物。菌的特點(diǎn)是：極小，肉眼看不見(jiàn)。
無(wú)處不在，無(wú)時(shí)不有，無(wú)孔不入。在自然條件下忍耐力強，生活條件要求簡(jiǎn)單，繁殖力極強，條件適宜時(shí)便可大量滋生。
無(wú)菌的范疇是：經(jīng)高溫灼燒或一定時(shí)間蒸煮過(guò)后的物體，經(jīng)其他物理或化學(xué)的滅菌方法處理后的物體（當然這些方法必須已經(jīng)證明是有效的），高層大氣、巖石內部、健康的動(dòng)、植物的不與外部接觸的組織內部，強酸強堿，化學(xué)元素滅菌劑等表面和內部都是無(wú)菌的。從以上可以看出：在地球表面無(wú)菌世界要比有菌世界小的多。
滅菌是指用物理或化學(xué)的方法，殺死物體表面和孔隙內的一切微生物或生物體，即把所有生命的物質(zhì)全部殺死。與此相關(guān)的一個(gè)概念是消毒，它指殺死、消除或充分抑制部分微生物，使之不再發(fā)生危害作用，顯然經(jīng)過(guò)消毒，許多細菌芽孢、霉菌厚垣孢子等不會(huì )完全殺死，即由于在消毒后的環(huán)境里和物品上還有活著(zhù)的微生物，所以通過(guò)嚴格滅菌的操作空間（接種、超凈臺等）和使用的器皿，以及操作者的衣著(zhù)和手都不帶任何活著(zhù)的微生物。
在這樣的條件下進(jìn)行的操作，就叫做無(wú)菌操作。 植物組織培養對無(wú)菌條件的要求是非常嚴格的，甚至超過(guò)微生物的培養要求，這是因為培養基含有豐富的營(yíng)養，稍不小心就引起雜菌污染。
要達到徹底滅菌的目的，必須根據不同的對象采取不同的切實(shí)有效的方法滅菌，才能保證培養時(shí)不受雜菌的影響，使試管苗能正常生長(cháng)。 常用的滅菌方法可分為物。
2.組織培養的步驟
配制培養基有兩種方法可以選擇，一是購買(mǎi)培養基中所有化學(xué)藥品，按照需要自己配制；二是購買(mǎi)商品的混合好的培養基基本成分粉劑，如MS、B5等。
自己配制可以節約費用，但浪費時(shí)間、人力、且有時(shí)由于藥品的質(zhì)量問(wèn)題，給實(shí)驗帶來(lái)麻煩。就目前國內的情況看，大部分還是自己配制。
為了方便起見(jiàn)，現以MS培養基為例介紹配置培養基的主要過(guò)程。1.配制幾種母液1.配制MS大量元素母液一般將大量元素分別配制成100倍的母液，使用時(shí)再分別稀釋100倍。
分別稱(chēng)取NH4NO3 165g KH2PO4 17gKNO3 190g CaCl2·2H2O 44gMgSO4·7H2O 37g各自配成1L的母液。倒入1L試劑瓶中，存放于冰箱中。
2.配制MS微量元素母液一般將微量元素配制成100倍母液。依次稱(chēng)取KI 0.083g Na2MoO4·2H2O 0.025gH3BO3 0.62g CuSO4·5H2O 0.0025gMnSO4·H2O 1.69g CoCl2·6H2O 0.0025gZnSO4·7H2O 0.86g配成1L母液，倒入1L試劑瓶中，存放于冰箱中。
CuSO4·5H2O和CoCl2·6H2O 由于稱(chēng)取量很小，如果天平精確度沒(méi)有達到萬(wàn)分之一，可先配成調整液。分別稱(chēng)取CuSO4·5H2O 0.05g CoCl2·6H2O 0.05g各自配成100ml的調整液，然后取5ml就還有0.0025g的量。
3.配制MS有機母液一般配制成100倍MS有機母液。依次稱(chēng)取肌醇 10g 鹽酸硫胺素（VB1） 0.01g煙酸 0.05g 甘氨酸 0.2g鹽酸吡哆醇（VB6） 0.05g配成1L母液，倒入1L試劑瓶中，存放于冰箱中。
4.配制MS鐵鹽母液一般配制成100倍MS鐵鹽母液。依次稱(chēng)取EDTA二鈉3.73g FeSO4·7H2O2.78g配成1L母液，倒入1L試劑瓶中，存放于冰箱中。
所以MS母液有5種大量元素母液，加上MS微量元素母液、MS有機母液和MS鐵鹽母液，共8種母液。激素母液的配制各種生長(cháng)素和細胞分裂素要單獨配制，不能混合在一起，生長(cháng)素類(lèi)一般要先用少量95%的酒精或1當量的NaOH溶解，細胞分裂素一般要先用1當量的鹽酸溶解，然后再加蒸餾水定容。
一般取100mg配成100ml母液。2.配制培養基以配置1L MS培養基為例，按順序進(jìn)行如下操作：1.先在燒杯中放入一些蒸餾水。
2.分別取上面八種母液10ml倒入。3.一般稱(chēng)取30g蔗糖倒入，攪拌溶解。
4.加蒸餾水用量筒定溶至1L。5.按設計好的方案添加各種激素，由于激素的用量很小，而且激素對組培植物的生長(cháng)至關(guān)重要。
所以有條件的話(huà)最好用微量可調移液器吸取，減少誤差。6.用精密試紙或酸度計調整PH至5.7~5.8。
（有條件的話(huà)使用酸度計，比較精確） 可配1當量的HCL和1當量的NaOH用來(lái)調溶液PH值。1當量HCL配制：用量筒量取8.3ml配成100ml溶液。
1當量NaOH配制：稱(chēng)取NaOH 4g 配成100ml溶液。7.稱(chēng)取5g左右瓊脂粉（質(zhì)量好的瓊脂粉），倒入上面配好的溶液中，放在電爐上加熱至沸騰，直到瓊脂粉熔化。
8.稍微冷卻后，分裝入培養容器中。無(wú)蓋的培養容器要用封口膜或牛皮紙封口，用橡皮筋或繩子扎緊。
9.放入消毒滅菌鍋滅菌，滅菌20分鐘左右。10.滅菌后從滅菌鍋中取出培養基，平放在實(shí)驗臺上令其冷卻凝固。
滅菌是組織培養重要的工作之一。初學(xué)者要清楚有菌和無(wú)菌的范疇。
有菌的范疇是：凡是暴露在空氣中的物體，接觸自然水源的物體，至少它的表面都是有菌的。依此觀(guān)點(diǎn)，無(wú)菌室等未處理的地方、超凈臺的表面、簡(jiǎn)單煮沸的培養基、我們使用的刀、剪在未處理之前、我們身體的整個(gè)外表及與外界相連的內表，如整個(gè)消化道、呼吸道，即我們呼出的氣體、培養容器無(wú)論洗得多干凈等等都是有菌的。
這里所指的菌，包括細菌、真菌、放線(xiàn)菌、藻類(lèi)及其他微生物。菌的特點(diǎn)是：極小，肉眼看不見(jiàn)。
無(wú)處不在，無(wú)時(shí)不有，無(wú)孔不入。在自然條件下忍耐力強，生活條件要求簡(jiǎn)單，繁殖力極強，條件適宜時(shí)便可大量滋生。
無(wú)菌的范疇是：經(jīng)高溫灼燒或一定時(shí)間蒸煮過(guò)后的物體，經(jīng)其他物理或化學(xué)的滅菌方法處理后的物體（當然這些方法必須已經(jīng)證明是有效的），高層大氣、巖石內部、健康的動(dòng)、植物的不與外部接觸的組織內部，強酸強堿，化學(xué)元素滅菌劑等表面和內部都是無(wú)菌的。從以上可以看出：在地球表面無(wú)菌世界要比有菌世界小的多。
滅菌是指用物理或化學(xué)的方法，殺死物體表面和孔隙內的一切微生物或生物體，即把所有生命的物質(zhì)全部殺死。與此相關(guān)的一個(gè)概念是消毒，它指殺死、消除或充分抑制部分微生物，使之不再發(fā)生危害作用，顯然經(jīng)過(guò)消毒，許多細菌芽孢、霉菌厚垣孢子等不會(huì )完全殺死，即由于在消毒后的環(huán)境里和物品上還有活著(zhù)的微生物，所以通過(guò)嚴格滅菌的操作空間（接種、超凈臺等）和使用的器皿，以及操作者的衣著(zhù)和手都不帶任何活著(zhù)的微生物。
在這樣的條件下進(jìn)行的操作，就叫做無(wú)菌操作。植物組織培養對無(wú)菌條件的要求是非常嚴格的，甚至超過(guò)微生物的培養要求，這是因為培養基含有豐富的營(yíng)養，稍不小心就引起雜菌污染。
要達到徹底滅菌的目的，必須根據不同的對象采取不同的切實(shí)有效的方法滅菌，才能保證培養時(shí)不受雜菌的影響，使試管苗能正常生長(cháng)。常用的滅菌方法可分為物理的和化學(xué)的兩類(lèi)，即：物理方法如干熱（烘燒和灼燒）、濕熱（常壓或高壓蒸煮）、射線(xiàn)處理（紫外線(xiàn)、超聲波、微波）、過(guò)濾、清洗和大量。
3.組織培養怎么做,求步驟,求方法
要根據培養目的適當選取材料，選擇原則：易于誘導、帶菌少。
要選取植物組織內部無(wú)菌的材料。這一方 面要從健壯的植株上取材料，不要取有傷口的或有病蟲(chóng)的材料。
另一方面要在晴天，最好是中午或下午取 材料，決不要在雨天、陰天或露水未干時(shí)取材料。因為健壯的植株和晴天光合呼吸旺盛的組織，有自身消 毒作用，這種組織一般是無(wú)菌的。
培養材料的消毒 從外界或室內選取的植物材料，都不同程度地帶有各種微生物。這些污染源一旦帶人培養基，便會(huì )造成 培養基污染。
因此，植物材料必須經(jīng)嚴格的表面滅菌處理，再經(jīng)無(wú)菌操作手續接到培養基上。第一步，將采來(lái)的植物材料除去不用的部分，將需要的部分仔細洗干凈，如用適當的刷子等刷洗。
把材 料切割成適當大小，即滅菌容器能放人為宜。置自來(lái)水龍頭下流水沖洗幾分鐘至數小時(shí)，沖洗時(shí)間視材料 清潔程度而宜。
易漂浮或細小的材料，可裝入紗布袋內沖洗。流水沖洗在污染嚴重時(shí)特別有用。
洗時(shí)可加 入洗衣粉清洗，然后再用自來(lái)水沖凈洗衣粉水。洗衣粉可除去輕度附著(zhù)在植物表面的污物，除去脂質(zhì)性的 物質(zhì)，便于滅菌液的直接接觸。
當然，最理想的清洗物質(zhì)是表面活性物質(zhì) — 吐溫。第二步是對材料的表面浸潤滅菌。
要在超凈臺或接種箱內完成，準備好消毒的燒杯、玻璃棒、70% 酒 精、消毒液、無(wú)菌水、手表等。用70% 酒精浸10 ~30s 。
由于酒精具有使植物材料表面被浸濕的作用，加之70% 酒精穿透力強，也很易殺傷植物細胞，所以浸潤時(shí)間不能過(guò)長(cháng)。有一些特殊的材料，如果實(shí)、花 蕾、包有苞片、苞葉等的孕穗，多層鱗片的休眠芽等等，以及主要取用內部的材料，則可只用70% 酒精處 理稍長(cháng)的時(shí)間。
處理完的材料在無(wú)菌條件下，待酒精蒸發(fā)后再剝除外層，取用內部材料。第三步是用滅菌劑處理。
表面滅菌劑的種類(lèi)較多，可根據情況選取1 —2 種使用見(jiàn)表。第四步是用無(wú)菌 水涮洗，涮洗要每次3min 左右，視采用的消毒液種類(lèi)，涮洗3-l0 次左右。
無(wú)菌水涮洗作用是免除消毒劑 殺傷植物細胞的副作用注意：①酒精滲透性強，幼嫩材料易在酒精中失綠，所以浸泡時(shí)間要短，防止酒精 殺死植物細胞。②老熟材料，特別是種子等可以在酒精中浸泡時(shí)間長(cháng)一些，如種子可以浸泡5 分鐘。
③升 汞的滲透力弱，一般浸泡10 分鐘左右，對植物材料的殺傷力不大。④漂白粉容易導致植物材料失綠，所 以對于幼嫩材料要慎用。
⑤在消毒液中加入濃度為0.08 —0.12% 的吐溫20 或80 （一種濕潤劑），可以 降低植物材料表面的張力，達到更好的消毒效果。滅菌劑 使用濃度（%） 持續時(shí)間 （ min ） 去除的難易 效 果 次氯酸鈣9~10 5~30 易 很好 次氯酸鈉2 5~30 易 很好 氯化汞0.1~1 5~8 較難 最好 抗菌素4~50mg/L 30~60 中 較好 制備外植體 將已消毒的材料，用無(wú)菌刀、剪、鑷等，在無(wú)菌的環(huán)境下，剝去芽的鱗片、嫩枝的外皮和種皮胚乳等，葉片則不需剝皮。
在操作中嚴禁用手觸動(dòng)材料。接種和培養 （一）接種 在無(wú)菌壞境下，將切好的外植體立即接在培養基上，每瓶接種1 -2 個(gè)，以防止交叉污染。
（二）封口 接種后，瓶、管用無(wú)菌藥棉或蓋封口，培養皿用無(wú)菌膠帶封口。（三）溫度 培養基大多應保持在25 ℃左右，但要因花卉種類(lèi)及材料部位的不同而區別對待。
增殖 外植體的增殖是組培的關(guān)鍵階段，在新梢等形成后為了擴大繁殖系數，需要繼代培養。把材料分株或切 段轉入增殖培養基中，增殖培養基一般在分化培養基上加以改良，以利于增殖率的提高。
增殖1 個(gè)月左右 后，可視情況進(jìn)行再增殖。根的誘導 繼代培養形成的不定芽和側芽等一般沒(méi)有根，必須轉到生根培養基上進(jìn)行生根培養。
1 個(gè)月后即可獲得 鍵壯根系。組培苗的煉苗移栽 試管苗從無(wú)菌到光、溫、濕穩定的環(huán)境進(jìn)入自然環(huán)境，必須進(jìn)行煉苗。
一般移植前，先將培養容器打開(kāi)，于室內自然光照下放3 天，然后取出小苗，用自來(lái)水把根系上的營(yíng)養基沖洗干凈，再 栽入已準備好的基質(zhì)中，基質(zhì)使用前最好消毒。移栽前要適當遮蔭，加強水分管理，保持較高的空氣濕度 （相對濕度98 %左右），但基質(zhì)不宜過(guò)濕，以防爛苗。
組織培養中的清洗、消毒滅菌技術(shù) 日期：2010 年4 月1 日 來(lái)源：互聯(lián)網(wǎng) 作者：植物組培網(wǎng) 點(diǎn)擊：21901 、清洗 植物組織培養用的各種玻璃器皿，特別是培養瓶和盛培養基的器皿，一定要嚴格清洗，以防油污、重金屬離子、酸、堿等有害物質(zhì)殘留在瓶?jì)龋绊懪囵B物的生長(cháng)。使用過(guò)的玻璃器皿應及時(shí)清洗，先將污 物如培養基、培養物倒掉，再浸入水中，然后洗滌。
玻璃器皿的洗滌，可根據器皿的污染程度和性質(zhì)，采 用不同的方法，通常有堿洗法和酸洗法。凡有微生物污染的器皿，必須先進(jìn)行高壓消毒和煮沸，以殺死菌 體，否則會(huì )產(chǎn)生孢子飛揚，污染環(huán)境，給組織培養帶來(lái)嚴重困難。
器皿洗凈后，應烘干或晾干，放在規定 的地方，便于取用。常用的滅菌方法可分為物理的和化學(xué)的兩類(lèi)，即：物理方法如干熱（ 烘燒和灼燒） 、濕熱（ 常壓或高壓蒸 煮） 、射線(xiàn)處理（ 紫外線(xiàn)、超聲波、微波） 、過(guò)濾、清洗和大量無(wú)菌水沖洗等措施；化學(xué)方法是使用升汞、甲 醛、過(guò)氧化氫、高錳酸鉀、來(lái)蘇兒、漂白粉、次氯酸鈉、抗菌素、酒精化學(xué)藥品處理。
4.細胞培養的方法有哪些
細胞培養首先分為原代培養和傳代培養.
原代培養需要從組織中消化、分離、純化出單細胞，然后繼續進(jìn)行傳代、凍存；
傳代培養首先：
細胞復蘇：
1.應遵守慢凍快融的原則.先將水溫鍋調至37-38度，取出凍存的細胞迅速放入后交細胞面浸至水面以下不斷搖動(dòng)至融化.
2.在無(wú)菌臺內將完全培養基加入培養瓶?jì)龋缓笥脽o(wú)菌吸管從凍存管內取出細胞，置培養瓶?jì)容p輕搖晃，使細胞均勻后置培養箱內培養，24h后換液；也可復蘇當時(shí)離心（1000rpm 5min左右）后，完全培養基重懸培養，適時(shí)換液.
細胞傳代：
1.貼壁細胞：
對于貼壁細胞應先吸（倒）盡培養基，吸的越干凈越好，以免中和后加入的消化液，使強度減弱.PBS清洗2-3次，去除血清和死細胞，50ml培養瓶加入消化液約0.6ml，按此比例進(jìn)行消化，（根據配制強度經(jīng)驗），晃動(dòng)使消化液鋪均勻置37度培養箱約2分鐘，鏡下見(jiàn)細胞收縮變圓或少數脫落后，輕輕振動(dòng)瓶底使細胞全部脫落，加入2-3ml完全培養基后，輕輕吹打，使細胞基本成單個(gè)懸浮，然后收集離心（1000rpm 5min左右），新鮮培養基重懸沉淀，加入完全培養基后繼續培養或實(shí)驗.
2.懸浮細胞：
一般傳代可直接將細胞原液分置其它培養瓶?jì)龋尤胪耆囵B基繼續培養，如要高濃度或需更換新培養基，可先離心（1000rpm,5min左右）后加入完全培養基，輕輕吹勻后，分置其它培養瓶?jì)燃尤胪耆囵B基繼續培養.
具體更詳細的你還是看看細胞培養的專(zhuān)業(yè)書(shū)吧！
5.植物的組織培養包括哪些
（一）按外植體的來(lái)源分 外植體：是指在植物組織培養過(guò)程中，從植物母體上取來(lái)，用于離體培養的初始材料。
（1）植株培養 是指對具有完整植株形態(tài)的幼苗或較大的植株進(jìn)行離體培養的方法。 （2）胚胎培養 是指對植物成熟或未成熟胚進(jìn)行離體培養的方法。
常用的胚胎培養材料有幼胚、成熟胚、胚乳、胚珠、子房。 （3）器官培養 是指對植物體各種器官及器官原基進(jìn)行離體培養的方法。
常用的器官培養材料有根（根尖，切段）、莖（莖尖、切段）、葉（葉原基、葉片、子葉）、花（花瓣、雄蕊）、果實(shí)、種子等。 （4）組織培養 是指對植物體各部位組織或已誘導的愈傷組織進(jìn)行離體培養的方法。
常用的組織培養材料有分生組織、形成層、表皮、皮層、薄壁細胞、髓部、木質(zhì)部等。 （5）細胞培養 是指對植物的單個(gè)細胞或較小的細胞團進(jìn)行離體培養的方法。
常用的細胞培養材料有性細胞、葉肉細胞、根尖細胞、韌皮部細胞等。 （6）原生質(zhì)體培養 是指對除去細胞壁的原生質(zhì)體進(jìn)行離體培養的方法。
（二）按培養過(guò)程分 （1）初代培養 將植物體上分離下來(lái)的外植體進(jìn)行最初幾代培養的過(guò)程。其目的是建立無(wú)菌培養物，誘導腋芽或頂芽萌發(fā)，或產(chǎn)生不定芽、愈傷組織、原球莖。
通常是植物組織培養中比較困難的階段，也稱(chēng)啟動(dòng)培養、誘導培養。 （2）繼代培養 將初代培養誘導產(chǎn)生的培養物重新分割，轉移到新鮮培養基上繼續培養的過(guò)程。
其目的是使培養物得到大量繁殖，也稱(chēng)為增殖培養。 （3）生根培養 誘導無(wú)根組培苗產(chǎn)生根，形成完整植株的過(guò)程。
其目的是提高組培苗田間移栽后的成活率。 （三）根據培養基的類(lèi)型分為： 1、固體培養： 瓊脂、卡拉膠等固化。
2、半液半固體培養：固液雙層。 3、液體培養：震蕩、旋轉或靜置培養。
（四）根據再生途徑分為： 1、愈傷組織途徑； 2、芽增殖途徑： 3、原球莖途徑： 4、體胚發(fā)生途徑： 集體的就上植物網(wǎng)。
